Кенококс инструкция по применению в ветеринарии

Кенококс

intelclean

2018-05-07T13:12:43+00:00

Кенококс — поликомпозиционное дезсредство, разработано для борьбы с кокцидиями всех типов путем уничтожения ооцист. Средство эффективно для профилактики эпидемии кокцидиозов на птицефабриках и животноводческих хозяйствах. 

Сфера использования и особенности:

1. До применения препарат на 2 дня помещают в место с температурой не ниже 20 градусов.

2. Борется с эндопаразитами.

3. Работает по классической программе, в комбинации с щелочным средством, дезинфицирующими препаратами. 

4. Требует высыхания.

5. Для получения раствора препарат 2-4% растворяют в воде, добиваются однородной консистенции, при необходимости нагревают для полного растворения. 

6. Для обработки подходит как пена, так спрей. Средство наносят на поверхности в зоне риска заражения, тщательно прорабатывают трещины, щели, пол, стены и даже потолок. Помещение плотно закрывают на 2 часа и более.

7. Хранят продукт при температуре >15°С за 24 часа до обработки.

Для профилактики распространения опасных бактерий:

• готовят 0.25% раствор, растворяя продукт в воде, при необходимости нагревая ее для полного растворения;

• препарат наносят на поверхности в виде пены или спрея, прорабатывают трещины, плинтуса, сколы, дают подействовать в закрытом помещении в течение 5 минут часов;

• комбинируют с дезсредством или щелочным продуктом для обработки. 

Безопасность: продукт не причиняет вреда окружающей среде, уровень разложения — 95%. Заказать Кенококс можно на сайте/интернет-магазине Dezkovrik.ru. с доставкой. 

Состав:

1. N-(3-аминопропил)-N-додецилпропан – 1.3 – диамин

2. Алкилдиметилбензиламмониумхлорид

3. Изопропанол

4. Этоксилированный спирт

Как хранить и использовать:

В концентрированном или готовом виде продукт хранят на безопасном расстоянии от животных, кормов, продуктов или напитков. Недопустим контакт с кожей, слизистой, одеждой, требует использования защитных перчаток, масок и одежды для обработки. Для хранения используется оригинальный контейнер. Продукт нуждается в проветриваемом, темном помещении, герметичности упаковки. 

Документы:

Сертификат соответствия

Свидетельство о регистрации ЕВРАЗЭС

Паспорт безопасности

Фасуется в канистры объемом в 10 литров. 

Краснобаев Ю.В. – канд. биологических наук, каф. птицеводства и болезней птиц ФГОУ ВПО МГАВМиБ имени К.И. Скрябина, Сафиуллин Р.Т. – Доктор ветеринарных наук, профессор, заведующий проблемной лабораторией ВИГИС.

Не секрет, что предотвратить болезни – всегда выгоднее, чем лечить. Однако при кокцидиозах эта задача до сегодняшнего дня оставалась трудно выполнимой. В числе основных средств борьбы с кокцидиозами являются кокцидиостатики. Необходимо учесть что, кокцидии способны вырабатывать резистентность к любому известному препарату. Происходит изменение характера метаболических процессов и появление мутагенных устойчивых форм, а также размножение природно-резистентных штаммов (Елисеева Е.Н. 2003). Причем сформированная резистентность к препарату генетически передается потомству и сохраняется у эймерий неопределенное время (Кириллова А.И., Мишина В.С.). Для увеличения стабильной эффективности кокцидиостатиков разработаны различные ротационные программы. При этом нельзя забывать и о требованиях безопасности в отношении готовой продукции, а именно нахождения в ней остаточных количеств кокцидиостатиков и их метаболитов. Кроме того, известно что, кокцидиостатики, вызывают раздражение слизистой оболочки кишечника, приводящего к нарушению усвояемости корма, а, следовательно, и его конверсии. Все это может привести к задержке роста и развития цыплят и ремонтного молодняка.
Альтернативой применения кокцидиостатиков является иммунопрофилактика, осуществляемая с помощью вакцин. Но в птицеводстве, при выращивании ремонтного молодняка, схема вакцинации начиная с первого дня жизни и так максимально насыщена, и к тому же вакцинация дает дополнительную нагрузку на иммунное состояние птицы, что создает предпосылки для развития других заболеваний и отражается на последующей продуктивности. Кроме того, в некоторых случаях использование живых вакцин вызывает реакции, похожие на естественный кокцидиоз, что требует незамедлительного лечения.

К сожалению, часто вакцинация и кокцидиостатики не полностью подавляют развитие эймерий, заболевание приобретает скрытый характер — без видимых проявлений. Резистентность и продуктивность такой птицы резко снижается, и гибель может наступить от любого другого заболевания.

Выйти из сложившейся ситуации можно с помощью санитарно-гигиенических мероприятий, направленных на уничтожение паразита во внешней среде, что обезопасит цыпленка хотя бы в первые дни после посадки в птичник и позволит нормально развиваться.

Ооцисты кокцидий покрыты плотной защитной оболочкой и очень устойчивы во внешней среде. Использование традиционных химических дезинфектантов (растворов 2-3% формалина, 2% едкого натрия, 5% кальцинированной соды, 3-5% креолина, 4% ксилонафта, раствора хлорной извести с содержанием 3% активного хлора, 20% взвеси свежегашеной извести и других) не дают значимого результата. Применение специфических препаратов, для уничтожений ооцист во внешней среде требуют длительной экспозиции и температуры рабочего раствора около 80°С, что связано с дополнительными затратами на нагревание воды. К физическим способам, в первую очередь, можно отнести использование пламени огня, но из-за пожарной безопасности и возможности разрушения оборудования и конструкций, использование данного способа часто не возможно. В связи с этим актуальной задачей является изыскание новых средств для уничтожения ооцист кокцидий во внешней среде, а, следовательно, профилактика кокцидиозов.

В последнее время на рынке появился препарат нового поколения – КЕНОКОКС КЛИНЕР (KENOCOX CLEANER). КЕНОКОКС КЛИНЕР содержит поверхностно активные вещества, обладающие естественными очищающими свойствами, а также увлажняющие агенты, что позволяет успешно бороться со всеми видами загрязнений.

В условиях вивария ГНУ ВИГИС и ВНИИТиП сотрудниками ВИГИС проведены лабораторные испытания, целью которых было изучить эффективность различных концентраций растворов препарата КЕНОКОКС КЛИНЕР против спорулированных ооцист кокцидий.

Для проведения опыта по принципу аналогов было сформировано 5 групп по 10 цыплят в каждой (табл. 1). Цыплята были свободны от кокцидий и получали корма без противококцидиозных препаратов. В 14-ти дневном возрасте цыплятам первой, второй и третьей группы перорально давали по 1 мл суспензии, содержащей по 2000 ооцист Eimeria tenella, обработанной 2; 4 и 6%-ми растворами препарата КЕНОКОКС КЛИНЕР соответственно. Для проведения сравнительного лизис-теста цыплятам четвертой группы также давали аналогичную суспензию, однако для обработки использовали 4% раствор фенола. Цыплят из пятой группы заражали суспензией без дополнительной обработки для контроля заражением кокцидиозом.

Таблица 1 Схема опыта

За время опыта цыплята всех групп находились в аналогичных условиях содер жания и имели одинаковый рацион. За цыплятами в течение всего периода опыта вели ежедневные клинические наблюдения за общим состоянием и поведением, приемом корма и воды, видимыми клиническими признаками, характерными для кокцидиоза. Для определения ооцист в помете, от цыплят каждой группы отдельно с 6 по 12-е сутки после заражения ежедневно собирали и исследовали весь помет. Наличие ооцист в помете определяли флотационным методом с подсчетом их в камере Мак Мастера (подсчет вели по 6 камерам в каждый период исследования). Эффективность дезинвазии разных концентраций препарата, а также 4%-ой концентрации базового препарата фенола определяли исходя из процента снижения выделения ооцист эймерий после воздействия на них отмеченными препаратами по сравнению с цыплятами контрольной группы.

В ходе проведения опыта можно отметить следующие результаты. Через 5 суток после назначения суспензии ооцист результаты взвешивания показали, что цыплята 1; 2 и 3 группы, которым назначили суспензии, обработанные различными концентрациями КЕНОКОКСА КЛИНЕР, имели средний прирост к исходной массе тела 301,5; 342,2 и 366,5 г соответственно. Цыплята 4 группы, получавшие суспензию, обработанную фенолом, имели средний прирост к исходной массе тела 300,4 г. Средний прирост к исходной массе тела через 5 суток в контрольной группе составил только 288,9 г (табл. 2).

Таблица 2 Изменение живой массы цыплят через 5 суток после заражения (n=10)

Полученные результаты показали, что у цыплят контрольной группы, а также 4-й опытной группы, инвазионный процесс, вызванный спорулированными ооцистами Eimeria tenella, протекал более интенсивно и оказал свое влияние на прирост живой массы. Дальнейшие исследования по определению количества выделяемых с пометом ооцист подтвердили полученные результаты.

Согласно условиям опыта с 6 по 12 сутки после заражения из каждой группы собирали помет и проводили копроскопические исследования (табл. 3). При определении количества ооцист в фекалиях опытных цыплят отмечено их наличие в определенном количестве, но не во всех группах. После обработки суспензии 2% — ным раствором КЕНОКОКС КЛИНЕР ооцисты в помете находили только через 5 суток, при этом процент снижения количества ооцист после воздействия на них препаратом составил 99,65% по сравнению с контрольной группой.

Таблица 3 Динамика выделения ооцист с пометом цыплят (в среднем на 1 камеру)

При исследовании проб помета от цыплят 2 и 3-й групп, которым давали суспензию ооцист, обработанную 4 — 6% — ным раствором КЕНОКОКС КЛИНЕР ни в одном случае ооцист не находили. После убоя цыплят, наличие возбудителя кокцидиоза (Е. tenella) на слизистой оболочке кишечника не обнаружено, что дает нам основание говорить о 100% эффективности препарата в отмеченных концентрациях против ооцист кокцидий птиц.

У цыплят 4-й опытной группы, которым назначали суспензию ооцист, обработанную 4% — ной концентрацией фенола (базовый препарат) ооцисты в помете находили во все сроки исследований (с 1 по 7 день), однако их количество было ниже, чем в контроле. Эффективность фенола в 4% — ной концентрации составила 70,79%.

Цыплята контрольной группы, получившие по 2000 спорулированных ооцист, во все сроки исследования с пометом выделяли ооцисты. Количество ооцист в 1 г помета по этой группе составило 4080.

Таким образом, проведенные исследования позволяют сделать вывод, что новый препарат КЕНОКОКС КЛИНЕР является наиболее эффективным средством против спорулированных ооцист кокцидий и проявляет высокую активность уже при 2% — ной концентрации в водном растворе. Однако для 100% — ной дезинвазии помещений следует рекомендовать использование 4% — ного раствора указанного препарата.

Применение 4% — ного водного раствора препарата КЕНОКОКС КЛИНЕР, совместно со стандартными процедурами очищения в хозяйстве, улучшает санитарное состояние помещений и позволяет избежать рисков значительных потерь, возникающих при кокцидиозах.

Литература:
1. Бессарабов, Б.Ф. Рецептурный справочник по болезням птиц – Суммы: МКИПП «Мрия», 1992. – 300 с.
2. Елисеева, Е. Эффективные средства профилактики паразитозов // Птицеводство, 2003; N 7. — С. 46-47.
3. Бакулин, В.А. Болезни птиц – С.-Петербург. 2006. — 686 с.
4. Вершинин И.И. Кокцидиозы животных и их дифференциальная диагностика. – Екатеренбург, 1996. – 264 с.
5. Крылов М.В. Определитель паразитических простейших. – С.- Петербург, 1996. – 693 с.

Подготовлено по материалам «VIого Международного Ветеринарного Конгресса по Птицеводству» для webmvc.com